Кокцидиостатики для птицы что это

Кокцидиоз у кур — лечение домашней птицы

Существует множество заболеваний, инфицированию которыми подвержены куры. Одно из опасных и сложно поддающихся лечению — кокцидиоз. Эта болезнь эпидемического характера, она приводит к летальному исходу 80–100% зараженного поголовья птиц.

Чтобы предупредить или вылечить кокцидоз на начальном этапе заражения, птицеводы должны понимать, как распознать у животных инфекцию, какие есть предупредительные меры и методы избавления от тяжелого недуга.

Описание недуга

Кокцидиоз (кокцидоз, эймериоз) — инфекционная болезнь, которая чаще всего поражает домашнюю птицу. Куры не исключение. Более губительна эта инфекция для цыплят, молодняка, не достигшего 3-месячного возраста, а также бройлеров — эти категории питомцев имеют слабый иммунитет. Юные особи чаще страдают от острой формы эймериоза, а у кур, устойчивых к бактериальным заражениям (к примеру, несушек), недуг принимает хроническую форму.

Хотя кокцидиоз — инфекция, он способен распространяться исключительно на животных одного вида, другим обитателям фермы не опасен. Например: если курица заразит этим недугом утку или кролика, бактерия, при попадании в их органы пищеварения, погибнет.

Возбудители кокцидиоза — простейшие, паразиты из подкласса кокцидии. У пернатых провоцируют это заболевание около 9 видов опасных паразитов, куры более подвержены заражению эймерией тонеллой. Она имеет свойство очень быстро размножаться.

Ооцисты (яйца одноклеточных) попадают в организм пернатого вместе с кормами и питьевой водой. Споры инфекции проникают в окружающую среду вместе с пометом, выделяемым зараженными животными. Еще они могут находиться на земле, траве и листьях растений. Переносчики этих бактерий — насекомые. Куры, обитающие в одном помещении, очень быстро заражают друг друга.

Ооцысты не погибают от влияния низкой температуры и дезинфицирующих средств. Губительно для яиц только воздействие высоких температур (для дезинфекции клеток и курятника используют паяльную лампу).

Клиническая картина эймериоза

При попадании в организм курицы патогенная флора активно размножается и наносит непоправимые повреждения органам пищеварения.

Кокцидиоз у кур проявляется в виде следующих симптомов:

Больной питомец резко худеет, его подстилка становится липкой и влажной. Если не принять необходимые меры, через 4–5 дней птица погибает. Иногда поставить диагноз очень трудно, так как недуг может протекать в скрытой форме.

Методы лечения домашней птицы

Чтобы изцелить пернатых от кокцидиоза птицеводы используют множество методов, к ним относят медикаментозную терапию, а также народные средства.

Лекарственные препараты

Все медикаменты, созданные для борьбы с кокцидиями, эффективны. Но у бактерий есть особенность: они быстро привыкают и вырабатывают резистентность ко многим химическим препаратам. Это необходимо учитывать при повторном лечении больных птиц — медикаменты следует чередовать.

Кокцидиовит

Кокцидиовит используют для лечения юных особей и цыплят. Главный действующий компонент: ампролиум гидрохлорид; вспомогательные вещества: витамины A, E, K. Вещество в первую очередь останавливает развитие вредных микроорганизмов, впоследствии простейшие погибают.

Для лечения курицы препарат разводят так: в 1 кг корма вносят 2,5 г лекарства, все тщательно перемешивают. Медикамент можно давать как профилактическое средство: его насыпают еду, но вполовину меньше (1,25 г к 1 кг пищи). Нужно побеспокоиться, чтобы птица съела весь приготовленный лечебный корм в течение одних суток. По прошествии суток готовят свежее «снадобье».

Курс терапии — неделя. На 7 сутки лечения, после последнего приема медикамента, птицу забивают.

Кокцидиостатики

Кокцидиостатики — это группа препаратов, которые оказывают подавляющее действие на эймерию.

Названия лекарств	Действующее вещество	Описание	Применение
Аватек	Ласалоцид натрия (15%)	Вещество губительно воздействует на вредных одноклеточных, способствует быстрому росту пернатых, выводится из организма животного легко, не меняя исходный вид. Добавку дают птицам 5 дней	Лекарство добавляют в пищу курице (1 г на 1 кг корма). Для предупредительных целей дозу препарата сокращают в 2 раза
Авиакс	Семдурамицин (5%)	Лекарство противококцидийного действия. Широко применяют для лечения бройлерных кур, несушкам его давать запрещено. Препарат можно добавлять в пищу птицам длительное время, не вызывает привыкания	В 1 кг пищи для птицы вмешивают 1 г медикамента. Для здоровых пернатых — 0,5 г
Кокцидин-10	Толуамид	Вещество применяют в качестве добавки к еде птицы. Выпускается в виде порошка, нерастворимого в воде. Может быть светло-желтым или коричневым. Активизируясь в организме животного, медикамент оказывает антикокцидийное действие. Прием лекарств осуществляют 5 дней	Во время лечения в 1 кг корма для курицы вносят 1 г вещества, 0,5 дают здоровым животным для укрепления иммунитета
Кокцисан	Салиномицин натрия (12%)	Гранулированный порошок мелкой фракции, цвет — коричневый. При активизации в организме животного, вещество останавливает рост колоний бактерий. Лекарство добавляют в пищу питомцам в течение недели	К 1 кг кормовой смеси добавляют 120 мг лекарства, в предупредительных целях 60 мг
Мадикос	Мудурамицин аммония	Серый или серо-бурый порошок, труднорастворимый в воде. Препатар блокирует процессы размножения кокцидий, оказывает губительное действие на паразитов. Курс приема вещества: 5–7 дней	В пищу высыпают лекарственную добавку и тщательно перемешивают. Больным пернатым: 1 г на кг корма, здоровым для профилактики: 0,5 г на кг еды
Никармикс	Никарбазин (25%)	Гранулированный порошок желтого цвета, обладает слабым запахом. Препарат оказывает губительное воздействие на бактерии. Лекарственное средство дают для профилактических целей цыплятам с первого дня после их вылупления. Он оказывает укрепляющее действие на организм, повышает иммунитет. Терапию проводят от 4 до 7 дней	В предупредительных целях дают по 0,5 г порошка, добавляя его в 1 кг корма птиц. Для лечения — лекарства дают в 2 раза больше

Кокципродин

Медикаментозное средство разрушает микроструктуру бактерий — возбудителей инфекции. Он способен уничтожить патогенную флору, не причинив вреда организму животного. Лекарство эффективно на любой стадии развития инфекции.

Форма выпуска: прозрачный раствор с желтым оттенком, имеет ярко выраженный характерный запах. Лекаство дают птицам, смешивая его с водой: на 1 л жидкости — 1 мл медикамента. Полученным раствором курицу поят на протяжении суток. Лечение проводят от 2 до 5 дней.

Антибиотики

Для излечения от эймериоза пернатых используют противомикробные препараты, которыми лечат людей: левомицетин, эритромицин и другие. Птицеводы с опытом утверждают, что терапия с применением этих препаратов намного эффективнее воздействует на бактерию, чем средства, предлагаемые ветеринарами. После окончания медикаментозной терапии мясо и яйца кур нельзя употреблять в пищу не меньше двух недель — 14 суток в этих продуктах содержится большое количество антибиотиков.

Нетрадиционные методы борьбы с кокцидией

Для избавления кур от кокцидиоза используют и народные средства, хотя они менее эффективны в сравнении с медикаментозной терапией.

В пищу домашних питомцев вмешивают серу. Она должна составлять 2% суточного рациона птицы. Терапию проводят 14 дней, дольше — нельзя, вещество провоцирует появление у кур рахита.

Многие птицеводы практикуют лечение заболевших питомцев йодом. Его разбавляют с питьевой водой: в 1 л жидкости вливают 2 мл 10%-го йода. Для приготовления раствора используют только стеклянную или пластмассовую посуду.

Порошок Осарол перемешивают с измельченным мучным кормом: на 1 кг живого веса птицы кладут 10 г вещества. Полученную смесь делят на две части, кормят ей птицу утром и вечером. Терапию проводят 5 дней, потом на 3 дня делают перерыв. Курс повторяют еще 4 раза с такими же интервалами.

Профилактические меры

Существует множество способов в домашних условиях обезопасить пернатых от заражения кокцидиями:

Важно вовремя проводить вакцинацию, правильно обустроить жилище домашним птицам и соблюдать нормы гигиены при уходе за ними. Все эти условия помогут избежать заражения питомцев опасным недугом.

Источник

Ветеринария

Кокцидиостатики при откорме бройлеров: тест на эффективность

НА РУБЕЖЕ XXI века развитие отечественного мясного птицеводства получило стремительное ускорение на основе новых в то время для нас стандартов мировой практики, что условно можно считать началом новой эпохи отрасли. Массово стали доступны импортные высокопродуктивные кроссы птицы, обеспечивающие максимальные показатели компоненты кормов, эффективные ветеринарные препараты, высокотехнологичное оборудование, современные технологии и пр. Пройден огромный путь: достигнуто самообеспечение страны отечественным мясом птицы, успешно развивается экспорт на внешние рынки. Динамичное развитие отрасли продолжается и в наши дни.

С точки зрения экономики птицеводческих предприятий мы наблюдали и продолжаем наблюдать постоянную трансформацию ключевых приоритетов. На заре стремительного взлета отечественного мясного птицеводства новой эпохи условным критерием квалификации специалистов во многом была сохранность птицы. Необходимо было научиться сохранять поголовье с современным генетическим потенциалом, обеспечивающим такие производственные показатели, о которых до той поры можно было только мечтать.

Однако в какой-то момент приоритет стал сдвигаться в сторону валового производства мяса птицы. Растущий отечественный рынок, в то время далекий от насыщения, требовал не просто обеспечить сохранность поголовья, а одновременно дать максимальный вал продукции. Основным показателем успешной работы команды специалистов птицеводческого предприятия стало количество мяса, получаемое с метра квадратного производственных площадей.

Высокая маржинальность отрасли позволяла лояльно относиться к некоторым недоработкам и просчетам, ведь в конечном итоге валовая продукция перекрывала все издержки. По мере насыщения рынка и усиления конкуренции приоритет смещался от количества производимого на птицеводческом предприятии мяса птицы к его себестоимости. В современном мире высокой конкуренции данный критерий, пожалуй, уже является главенствующим. В наши дни два графика — себестоимости и выручки от реализации продукции — зачастую близки как никогда ранее. Это значит, что любые факторы, снижающие эффективность использования ресурсов предприятия, становятся критически значимыми.

В структуре производственных затрат птицефабрик порядка 70% — это затраты на корма. Эффективность использования корма напрямую зависит от состояния кишечника птицы. Наблюдая нарушения целостности кишечника у цыплят-бройлеров и непереваренные фрагменты корма в помете птицы, специалисты птицеводческих предприятий все более ясно осознают, что это по сути потерянные деньги, вернее, их эквивалент.

В экономике мясного птицеводства одним из основных вызовов был и остается кокцидиоз. Эпителиальные клетки кишечника птицы, призванные обеспечивать эффективное использование корма, являются домом для паразита. Инвазированные эпителиоциты вынуждены обеспечивать рост и развитие кокцидий, фактически выключаясь из процесса переваривания корма. Разрушенные клетки эпителия создают питательную среду для роста патогенной микрофлоры, в частности Clostrudium perfringens. Естественной реакцией пораженного кишечника является ускоренное движение корма, который из-за нарушения процессов переваривания и всасывания покидает птицу, не отдав в полной мере питательные вещества. Предприятие недополучает прибыль или терпит убытки.

За почти вековой период противостояния промышленного птицеводства и кокцидий изучена биология паразита, разработаны санитарные мероприятия, внедрены средства и методы профилактики и лечения. Однако проблема предотвращения кокцидиоза не теряет актуальности, а ущерб от заболевания по-прежнему значителен. В свете вышесказанного становится очевидным, что в современных условиях контроль кокцидиоза требует особого внимания, а старые подходы в вопросах профилактики не всегда бывают максимально эффективны.

Существует достаточно большая номенклатура ветеринарных препаратов, обладающих антикокцидийной активностью. Сформулированы основные принципы построения антикокцидийной программы, иногда именуемые «золотыми правилами ротации»:

1. Не использовать один и тот же кокцидиостатик слишком долго (для ионофоров — не более 6 месяцев, для химических — до 3 месяцев в полноротационной и до 4,5 месяцев в челночной программе).

2. Чередовать препараты различных классов. 3. Перед повторным использованием продукта обеспечить достаточный период отдыха.

4. Не реже одного раза в год осуществлять «химическую чистку» — использовать кокцидиостатики химической природы.

Ротационные программы, составленные с учетом данных правил, дают хороший результат. Но возникает вопрос: является ли выбор оптимальным? Например, по правилам ротации применимы несколько кокцидиостатиков, а какой следует выбрать? Безусловно, каждый из них окажет антикокцидийное действие. Но разница даже в несколько граммов привеса на голову, которые самый эффективный препарат дополнительно убережет от кокцидий по сравнению с немного менее эффективным, — это значительная сумма для многомиллионного поголовья.

Антибиограмма, в обиходе именуемая «подтитровкой», уже достаточно давно вошла в повседневную практику птицеводческих предприятий в отношении микробных возбудителей. Программа антибактериальной защиты формируется с учетом чувствительности полевой патогенной микрофлоры. И ветеринарные специалисты часто задаются вопросом: можно ли что-то подобное осуществить с кокцидиями?

Очевидно, что в классическом, лабораторном варианте in vitro подобные тесты по отношению к возбудителям кокцидиоза неосуществимы. Кокцидии являются внутриклеточными облигатными паразитами и, в отличие от бактериальных болезнетворных агентов, не культивируются на питательных средах. Споры кокцидий, ооцисты, находятся в замершем состоянии во внешней среде, а активизируются, только проникнув в эпителиальные клетки кишечника птицы.

Однако экономический ущерб от кокцидиоза в промышленном птицеводстве слишком значительный, и это не позволяет смириться с выбором программы лишь с учетом правил ротации, основываясь на предположительных выводах об их эффективности. Поиск методик определения чувствительности полевых популяций кокцидий к кокцидиостатикам привел к реализации единственно возможного решения — моделированию производственной ситуации в лабораторных условиях, in vivo.

Впервые преимущества подобного тестирования оценили птицеводы западных стран, так как исследования выполнялись на базе нескольких мировых лабораторий и были доступны лишь крупным птицеводческим предприятиям ввиду сложности постановки и, соответственно, высокой стоимости.

Подобные исследования весьма востребованы в наши дни, так как их результаты являются наиболее достоверным ориентиром при составлении антикокцидийной программы. Очередность таких тестов и сложности с транспортировкой материала за границу сделали практически недоступным осуществление данных исследований на базе западных лабораторий для отечественных предприятий.

С 2018 года тесты на чувствительность полевых изолятов кокцидий к кокцидиостатикам успешно выполняются на базе ФГБУ ВО Белгородского ГАУ. Птицеводческие предприятия, осуществившие данный тест, имеют неоспоримое преимущество — точное ранжирование по эффективности участвующих в опыте препаратов.

Исследование состоит из нескольких этапов, каждый из которых требует соответствующих знаний, навыков, опыта и точного соблюдения протокола, так как ошибки приводят к невозможности завершения опыта или недостоверному результату.

Материалом для исследования является содержащий ооцисты кокцидий помет цыплят-бройлеров, который отбирается на производственных площадках и консервируется надлежащим образом, а затем доставляется в лабораторию. Далее в лабораторных условиях полевой изолят кокцидий отделяется от помета центрифугированием и мультиплицируется методом in vivo на птице в виварии университета до накопления в количестве, достаточном для постановки опыта.

Формируется 10 групп цыплят, по 6 голов в каждой, клинически здоровых, из одного источника, которых помещают в клетки вивария. Таким образом получают 8 опытных групп и 2 контрольные, которые содержатся в одном общем помещении в равных условиях.

Неинвазированный контроль отражает рост и развитие цыплят, свободных от кокцидиоза. Инвазированный контроль отражает рост и развитие цыплят при инвазии кокцидиями в дозе 3,25 млн спорулированных ооцист на голову (мультивидовым миксом через зонд). Разница в приросте массы тела птицы из контрольных групп — неинвазированной и инвазированной — делает измеримым потенциал вреда от данного полевого изолята кокцидий.

Птица опытных групп инвазируется аналогичным с зараженной контрольной группой образом, строго равным количеством ооцист для каждой головы. За день до инвазирования и далее на протяжении всего эксперимента птица каждой опытной группы получает корм со своим кокцидиостатиком в дозировке, предписанной официальной инструкцией. Обязательное условие участия кокцидиостатиков в опыте — они должны быть доставлены в ФГБУ ВО Белгородского ГАУ в невскрытой упаковке завода-изготовителя.

Инвазируют птицу в возрасте 13 суток, завершают исследование на 23 сутки. За этот опытный период, с одной стороны, в полной мере проявится негативное действие кокцидий, а с другой — в соответствии с биологией жизненного цикла паразита не происходит неконтролируемая повторная инвазия, которая могла бы исказить результаты. По завершении опыта составляется отчет, отражающий результаты опытных групп в сравнении с контрольными.

За кажущейся простотой теста по определению чувствительности кокцидий к кокцидиостатикам методом in vivo на базе ФГБУ ВО Белгородского ГАУ, за каждым выполненным опытом стоит множество сложных этапов и действий, требующих навыков и практических наработок, слаженной работы команды специалистов-энтузиастов.

Основным принципом работы является открытость. Представители птицеводческого предприятия, кокцидии которого тестируются на чувствительность к кокцидиостатикам, могут не только посетить Университет на любом этапе опыта, но и принять участие в его выполнении: инвазировать птицу, завершить опыт с оценкой прироста массы контрольных и опытных групп, произвести подсчет кокцидийных поражений кишечника. Кроме того, установленные в виварии видеокамеры позволяют вести круглосуточное наблюдение за ходом опыта дистанционно, доступ предоставляется через сеть интернет.По завершении опыта формируется отчет, отражающий полученные результаты и рекомендации по антикокцидийной программе.

РЕКОМЕНДАЦИИ. Для эффективной защиты птицы от кокцидиоза важно не только выбрать наиболее эффективные антикокцидийные продукты, но и составить правильную схему их ротации. Кроме того, кокцидиостатик должен быть равномерно распределен в корме, так, чтобы каждая голова на откорме потребляла препарат в количестве, достаточном для антикокцидийного действия. Для этого необходимо использовать качественные антикокцидийные продукты, в которых действующие вещества сопряжены с наполнителем таким образом, чтобы избежать расслоения и при этом обеспечить равномерное смешивание их с кормом. Примером высокотехнологичных продуктов являются кокцидиостатики «Зоэтис», такие как Аватек, Декокс, Громакс, Робенз и Цигро.

РЕЗЮМЕ. За долгий период противостояния промышленного птицеводства и кокцидий разработано много противококцидийных препаратов и сформулированы основные принципы антикокцидийной программы на основе «золотых правил» ротации.

Эти программы дают хороший результат, но возникает вопрос: как из нескольких средств выбрать оптимальное?

Ответ на этот вопрос дает моделирование производственной ситуации в условиях in vivo, которое укажет достоверные ориентиры для составления антикокцидийной программы. Данные исследования на базе западных лабораторий для отечественных предприятий стали практически недоступны. Однако с 2018 года тесты на чувствительность полевых изолятов кокцидий к кокцидиостатикам успешно выполняются на базе ФГБУ ВО Белгородский ГАУ. Птицеводческие предприятия, осуществившие данный тест, имеют неоспоримое преимущество — точное ранжирование по эффективности участвующих в опыте препаратов.

Источник

Кокцидиостатики: золотое правило ротации

Татьяна ТИТОВА, кандидат ветеринарных наук ВНИВИП — филиал ФНЦ ВНИТИП РАН
Сергей ОРЛОВ, технический специалист подразделения по работе с ключевыми клиентами (птицеводство) ООО «Зоэтис»

Кокцидиоз — болезнь сельскохозяйственной птицы, вызываемая простейшими рода Eimeria и протекающая в виде энзоотий с поражением кишечника. Несмотря на успехи в таких областях науки, как биотехнология, иммунология и генетика, заболевание остается одной из наиболее распространенных патологий в бройлерном и яичном птицеводстве во всем мире.

Экономические потери от кокцидиоза, по оценкам экспертов, составляют 0,8–1,5 млрд долл. в год. Это обусловлено гибелью птицы, задержкой ее роста и развития, снижением продуктивности и ухудшением качества мяса, а также дополнительными затратами кормов и ветеринарных препаратов.

Для кокцидий характерна строгая видовая специфичность: невозможно заразить кур кокцидиями гусей, уток, индеек и наоборот. Для кур наиболее вирулентны E. tenella, E. necatrix, E. brunetti, E. мaxima, E. acervulina и др. В организме птицы одновременно могут паразитировать несколько видов кокцидий, различающихся по чувствительности к химиопрепаратам.

Кокцидии обладают способностью к чрезвычайно интенсивному размножению. Ооцисты весьма устойчивы к воздействию физических и химических факторов. В России на птицефабриках чаще всего регистрируют пять видов кокцидий — E. аcervulina, E. brunetti, E. maxima, E. necatrix, E. tenella.

Основное звено в системе профилактики кокцидиоза кур — применение антикокцидийных препаратов. Их история берет начало в 40-х годах прошлого столетия с новаторской публикации сотрудников государственной сельскохозяйственной станции Род-Айлендского университета, которые заявили, что предотвратить кокцидиоз кур можно путем включения в рацион химических веществ в низких концентрациях.

В последующие годы было разработано, изучено и внедрено много новых эффективных антикокцидийных средств. В то же время появилось немало сообщений о выделении различных видов кокцидий, устойчивых к сульфаниламидам, нитрофуранам, метилхлорпиндолу, ампролиуму и другим соединениям. В 1980-х гг. выделили резистентные к ионофорным антибиотикам культуры кокцидий.

Один из способов предупреждения развития лекарственной устойчивости кокцидий — постановка теста на чувствительность полевого изолята к антикокцидийным препаратам. Эта методика характеризуется прогностической информативностью и позволяет скорректировать программу профилактических мероприятий на конкретном птицеводческом предприятии.

Исследования проводили на цыплятах-бройлерах (возраст — 14 суток), приобретенных в хозяйстве, благополучном по инфекционным и инвазионным болезням. Молодняк содержали в виварии, кормили в соответствии с возрастом. Использовали антикокцидийные препараты (аналоги пиримидина, производные алкалоидов и гуанидина, полиэфирные ионофорные антибиотики).

Из биологического материала, полученного на разных птицеводческих предприятиях нашей страны, по общепринятым методикам выделяли, очищали и размножали культуры кокцидий. Их видовой состав определяли по морфологическим и биометрическим признакам ооцист и патоморфологическим изменениям кишечника зараженной птицы. Спорулированные ооцисты хранили в холодильнике при температуре 2–4 °С в 2,5%-м растворе калия двухромовокислого.

В ходе эксперимента птицу разделили на группы по 5–6 голов в каждой. Корм смешали с антикокцидийными препаратами в дозах, указанных в инструкции по применению, и за сутки до заражения скормили цыплятам. Особей первой контрольной группы не инфицировали, второй контрольной — инфицировали, но препарат не давали. Птица опытных групп потребляла корм с антикокцидийным препаратом в течение десяти дней.

В начале и в конце опыта цыплят взвешивали, чтобы определить среднюю массу каждого из них. Наблюдения вели на протяжении всего опыта, при этом отмечали клинические проявления эймериоза и учитывали результаты патолого-анатомического вскрытия павшей птицы.

Антикокцидийную активность изучаемых препаратов оценивали по методике М. В. Крылова с использованием данных по летальности и приросту живой массы цыплят в разных группах.

Результаты опыта показали, что при противококцидийном индексе (ПКИ) менее 120 баллов и падеже свыше 20% у возбудителя сформировалась высокая резистентность к препарату, а при ПКИ 120–160 баллов и падеже до 20% — частичная. При ПКИ 160–200 баллов и отсутствии падежа признаков адаптации к препарату не выявили.

При исследовании биологического материала, взятого от цыплят-бройлеров в возрасте 21–40 суток, выделили кокцидии E. acervulina, E. maxima и E. tenella, представленные моновидовыми и поливидовыми культурами (фото 1 и 2).

Фото 1. Культура E. acervulina (окулярх10, объективх40)

Фото 2. Смесь культур E. acervulina, E. tenella и E. maxima (окулярх10, объективх40)

На фото видно, что ооцисты E. acervulina имеют яйцевидную форму, протоплазматическая масса неспорулированных эймерий просматривается в виде шара с плавными очертаниями. На заостренном конце есть слабозаметное микропиле (отверстие в оболочке).

Ооцисты E. maxima значительно крупнее, чем ооцисты E. acervulina. Они яйцевидной (реже — овальной) формы, протоплазматическая масса в неспорулированных кокцидиях шаровидная (см. фото 2). Ооцисты E. tenella окружены двухконтурной оболочкой, которая придает им слегка зеленоватый оттенок. На одном из полюсов ооцисты имеется полярная гранула, микропиле отсутствует (см. фото 2).

Чтобы определить чувствительность моновидовой культуры кокцидий к антикокцидийным препаратам, цыплят заразили спорулированными ооцистами E. acervulina в дозе 3 млн ооцист на голову. Для оценки чувствительности поливидовой культуры кокцидий к антикокцидийным средствам цыплят инфицировали спорулированными ооцистами: E. аcervulina — в дозе 2 млн ооцист на голову, E. tenella — 0,1 млн и E. maxima — 0,1 млн. За птицей наблюдали на протяжении десяти дней.

На 4–5-е сутки бройлеры, зараженные спорулированными ооцистами моновидовой и поливидовой культур, погибли. Павшую птицу вскрыли. При этом зафиксировали патолого-анатомические изменения в желудочно-кишечном тракте. Чтобы выявить стадию развития кокцидий, исследовали образцы соскобов со слизистой оболочки пораженного кишечника (фото 3–5).

Инвазирование цыплят поливидовой культурой кокцидий стало причиной значительного поражения различных отделов кишечника. При заражении E. аcervulina и моновидовой культурой изменения в двенадцатиперстной кишке были идентичными (см. фото 3).

Фото 3. Двенадцатиперстная кишка с отложения мибляшек при инвазии E. Acervulina

Фото 4. Средняя степень поражения слепых отростков кишечника при инвазии E. Tenella

При средней степени инвазии E. tenella на слизистой слепых отростков кишечника зафиксировали кровоизлияния и небольшое количество крови в содержимом (см.фото 4).

При инвазии E. maxima поражалась средняя часть тонкой кишки. На слизистой выявили разлитые кровоизлияния. Содержимое кишечника было оранжевого цвета (см. фото 5).

Фото 5. Поражения средней части тонкой кишки при инвазии E. мaxima

Мы установили степень чувствительности моновидовых и поливидовых культур кокцидий к антикокцидийным препаратам. Результаты исследований представлены в таблице 1.

Из таблицы видно, что противококцидийный индекс варьировал от 131 (у изолята № 1, представленного поливидовой культурой, — к никарбазину + монензину) до 203 баллов (у изолята № 3, представленного поливидовой культурой, — к робенидину).

Степень резистентности полевых изолятов кокцидий отражена в таблице 2.

Из данных таблицы видно, что только изолят № 5, представленный поливидовой культурой кокцидий, чувствителен к исследованным антикокцидийным препаратам. Изолят № 3 (поливидовая культура кокцидий) оказался чувствительным к семи препаратам и частично резистентным к никарбазину + монензину. Изолят № 6 (моновидовая культура кокцидий) показал чувствительность к двум из пяти исследованных антикокцидийных препаратов. Оставшиеся три полевых изолята кокцидий, представленные как моновидовой, так и поливидовой культурами, имели частичную резистентность ко всем исследованным препаратам.

Установлено, что к никарбазину + монензину частичная резистентность была у четырех полевых изолятов из четырех протестированных, к мадурамицину — у четырех полевых изолятов из шести протестированных, к никарбазину и салиномицину — у трех изолятов кокцидий из шести протестированных, к робенидину и ласалоциду — у двух и трех изолятов соответственно из шести протестированных.

Обсуждение

Полученные нами данные по резистентности полевых изолятов кокцидий к антикокцидийным препаратам совпадают с выводами других авторов. Так, H. W. Peek и W. J.M. Landman определили чувствительность 15 изолятов кокцидий (выделены в 1996, 1999 и 2001 гг.) к монензину, наразину, салиномицину, ласалоциду, никарбазину, диклазурилу и мадурамицину.

Из четырех изолятов E. acervulina, выделенных в 1996 г., лишь один показал чувствительность к салиномицину и мадурамицину. К большинству исследованных препаратов резистентными оказались выделенные и в 1999 г. изоляты E. аcervulina. К салиномицину их чувствительность снизилась. Опыты, проведенные в 2001 г., продемонстрировали, что чувствительность полевых изолятов повысилась сразу к нескольким препаратам.

B. Stephan и группа ученых изучали чувствительность полевых изолятов кокцидий к антикокцидийным препаратам на севере Германии и установили, что девять из десяти исследованных полевых изолятов обладали резистентностью. У семи изолятов выявлена частичная или полная устойчивость к мадурамицину, у шести — к монензину, у пяти — к салиномицину, у восьми — к никарбазину. Резистентность к нескольким антикокцидийным препаратам была у семи из десяти изолятов.

Таблица 1

Чувствительность полевых изолятов кокцидий к антикокцидийным препаратам индивидуальна и характеризуется изменчивостью. Иными словами, резистентность кокцидий на разных предприятиях будет отличаться, а со временем при использовании тех или иных кокцидиостатиков ситуация изменится. Поэтому, чтобы иметь достоверные данные, исследования придется повторять.

На практике резистентность паразитов к антикокцидийным препаратам является серьезной проблемой: снижается эффективность химиотерапии и химиопрофилактики в борьбе с кокцидиозом. От того, насколько правильно решают эту задачу в хозяйстве, зависит его благополучие.

Во избежание развития резистентности кокцидий к препаратам на птицефабриках обычно разрабатывают программы ротации кокцидиостатиков. При этом учитывают следующие базовые принципы:

— не используют один отдельно взятый кокцидиостатик слишком долго;

— чередуют препараты различных классов;

— обеспечивают достаточный отдых поголовья перед повторным применением средства, что позволяет повысить его эффективность;

— химические кокцидиостатики применяют не реже одного раза в год.

В мире эти принципы получили название «Золотое правило ротации». Тем не менее очень часто в качестве ротационных партнеров используют несколько продуктов. Какой окажется лучше? Несмотря на высокую эффективность каждого из них, разница в несколько пунктов противококцидийного индекса отразится на приростах живой массы.

При выборе препаратов не стоит полагаться на интуицию. Программа ротации кокцидиостатиков, основанная на данных о чувствительности полевых изолятов кокцидий, позволяет максимально защитить поголовье от заболевания.

В ходе исследования мы смоделировали процесс воздействия полевых кокцидий на птицу и оценили эффективность каждого задействованного в опыте противококцидийного продукта.

В 2017 г. ученые ВНИВИП при участии специалистов одного из ведущих производителей антикокцидийных препаратов — компании Zoetis — провели четыре эксперимента по определению чувствительности выделенных в хозяйствах полевых изолятов кокцидий к 11 действующим веществам и их комбинациям.

Данные, полученные в ходе исследований, позволили птицеводам принять оптимальное решение: разработать программу защиты поголовья от кокцидиоза и благодаря этому достичь высоких производственных показателей.

Источник